Александра Лашко | Ветеринарная медицина экзотических животных
رفتن به کانال در Telegram
Практика ветеринарного врача по экзотическим и зоопарковым животным 🦎🐢🐍🐀🐇🦝🦩🦥🐆🦘 МО, Королёв, ВК «Доктор Ай» | ВЦ Akimov Vet г.Щелково |Зоопарки частная практика Связь: @drAlimovskya
نمایش بیشتر1 892
مشترکین
اطلاعاتی وجود ندارد24 ساعت
+57 روز
+2730 روز
در حال بارگیری داده...
کانال‌های مشابه
ابر برچسب‌ها
اشارات ورودی و خروجی
---
---
---
---
---
---
جذب مشترکین
اکتبر '26اکتبر '26
اکتبر '26
+8
در 2 کانال‌ها
سپتامبر '26
+44
در 4 کانال‌ها
Get PRO
اوت '26
+62
در 4 کانال‌ها
Get PRO
ژوئیه '26
+31
در 3 کانال‌ها
Get PRO
ژوئن '26
+28
در 4 کانال‌ها
Get PRO
مه '26
+41
در 4 کانال‌ها
Get PRO
آوریل '26
+68
در 3 کانال‌ها
Get PRO
مارس '26
+41
در 2 کانال‌ها
Get PRO
فوریه '26
+53
در 3 کانال‌ها
Get PRO
ژانویه '26
+70
در 1 کانال‌ها
Get PRO
دسامبر '25
+83
در 7 کانال‌ها
Get PRO
نوامبر '25
+79
در 4 کانال‌ها
Get PRO
اکتبر '25
+206
در 12 کانال‌ها
Get PRO
سپتامبر '25
+81
در 5 کانال‌ها
Get PRO
اوت '25
+96
در 4 کانال‌ها
Get PRO
ژوئیه '25
+54
در 6 کانال‌ها
Get PRO
ژوئن '25
+50
در 2 کانال‌ها
Get PRO
مه '25
+68
در 3 کانال‌ها
Get PRO
آوریل '25
+65
در 3 کانال‌ها
Get PRO
مارس '25
+69
در 4 کانال‌ها
Get PRO
فوریه '25
+72
در 6 کانال‌ها
Get PRO
ژانویه '25
+55
در 1 کانال‌ها
Get PRO
دسامبر '24
+39
در 3 کانال‌ها
Get PRO
نوامبر '24
+64
در 3 کانال‌ها
Get PRO
اکتبر '24
+49
در 2 کانال‌ها
Get PRO
سپتامبر '24
+40
در 0 کانال‌ها
Get PRO
اوت '24
+132
در 0 کانال‌ها
Get PRO
ژوئیه '24
+48
در 3 کانال‌ها
Get PRO
ژوئن '24
+10
در 1 کانال‌ها
Get PRO
مه '24
+19
در 0 کانال‌ها
Get PRO
آوریل '24
+67
در 0 کانال‌ها
Get PRO
مارس '24
+66
در 4 کانال‌ها
Get PRO
فوریه '24
+450
در 0 کانال‌ها
| تاریخ | رشد مشترکین | اشارات | کانال‌ها | |
| 10 اکتبر | 0 | |||
| 09 اکتبر | 0 | |||
| 08 اکتبر | 0 | |||
| 07 اکتبر | 0 | |||
| 06 اکتبر | +1 | |||
| 05 اکتبر | +3 | |||
| 04 اکتبر | +2 | |||
| 03 اکتبر | +1 | |||
| 02 اکتبر | +1 | |||
| 01 اکتبر | 0 |
پست‌های کانال
+3
Друзья и коллеги!
17–18 октября состоится главное событие герпетологической сферы — крупнейшая в России выставка-продажа Reptilium. Это не только возможность увидеть редчайших животных, но и площадка для обмена профессиональным опытом.
18 октября я приглашаю вас в лекционный зал на специализированный семинар, посвященный одной из самых сложных и обсуждаемых тем в террариумистике — анестезии рептилий.
Многие киперы боятся наркоза больше, чем самой операции, часто руководствуясь устаревшими данными или мифами. На лекции мы разберем ситуацию с точки зрения доказательной ветеринарии.
В программе:
• Что такое анестезия для рептилий и чем она отличается от млекопитающих.
• Развенчание мифов о смертельной опасности наркоза.
• Профилактика осложнений: как подготовить животное и избежать критических ошибок.
• Клинические случаи из практики: реальные примеры, когда животное попало на операционный стол, и анализ того, как этого можно было избежать.
Важно: Лекция ориентирована на киперов и владельцев животных. Мы не будем разбирать конкретные препараты и дозировки. Цель — дать вам понимание процессов и алгоритмов безопасности, чтобы вы могли грамотно взаимодействовать с врачом и понимать риски.
Жду вас 18 октября. Берегите своих питомцев и повышайте свою компетентность!
| 2 |  +6Клинический отчёт: Извлечение пелёнки из желудочно-кишечного тракта радужного удава
Взрослый радужный удав (Epicrates cenchria) был направлен коллегами на гастроскопию после проглатывания впитывающей пелёнки для животных размером 90×60 см. Инородное тело локализовалось в двенадцатиперстной кишке. Под общей анестезией пелёнка была полностью извлечена с помощью манипулятора «крокодил» через гастроскоп. Операционное время составило 40 минут. После извлечения проведена ревизия слизистой оболочки на предмет повреждений — всё в норме.
Протокол:
•Meloxicam 0,5mg/kg
•NaCl 0,9% 10ml/kg в/в
•Индукция осуществлялась газовым анестетиком (изофлуран) в концентрации 5 об.%, поддержание — тем же агентом в открытом контуре при 3 об.%. Интубация выполнена после индукции.
После операционно:
•Антипсин 20mg/kg
•Альмагель 1ml/kg
•Голодная диета на 14 дней обоснована: после эндоскопии необходимо время для восстановления слизистой и наблюдения за возможными отсроченными повреждениями. Для взрослого удава такой срок голодания приемлем, но необходим свободный доступ к воде. В период голодания следует контролировать выделение мочевой кислоты и кала для исключения стриктур или
обструкции после повреждения кишечной стенки.
Причины:
•Хемосенсорная дезориентация. Змеи воспринимают окружающий мир преимущественно через вомероназальный орган. Ткани, контактировавшие с млекопитающими — грызунами или человеком — несут на себе следовые запахи, которые могут запускать пищевой поисковый алгоритм.
•Сопутствующее заглатывание при кормлении. Это наиболее частый механизм в неволе. Если владелец кладёт кормовой объект на пелёнку, салфетку или подстилку, змея при заглатывании добычи захватывает и субстрат.
•Запуск врождённого стереотипа глотания. Механизм «птеригоидного хода» у змей работает так: после захвата объекта зубы начинают продвигать его в глотку ротацией челюстных костей. Остановить этот процесс после запуска крайне сложно. Если предмет проходит через ротоглотку по размеру, глотательная последовательность продолжается до конца.
•Исследовательское поведение в условиях неволи. Часть ветеринарных специалистов связывает такое поведение со стрессом, скудной средой или недостатком сенсорной стимуляции. Гипотеза минеральной недостаточности упоминается, но экспериментальных подтверждений не имеет.
Выбранная тактика рациональна: эндоскопическое извлечение под общей анестезией предпочтительнее лапаротомии — меньше травматизация, быстрее восстановление. Локализация инородного тела в двенадцатиперстной кишке, а не дистальнее, позволила выполнить трансоральный эндоскопический доступ. Ревизия после извлечения не выявила перфорации или выраженного повреждения слизистой, прогноз благоприятный.
Хирург: Климовский А.И.
Анестезиолог: Лашко А.В.
Лечащий врач: Эскин Ф.П.
Команда ветеринарного центра Akimov vet | 536 |
| 3 |  +4Методы определения пола
📌Пальпация с выведением наружных половых органов
Данный метод предполагает аккуратное мануальное выведение полового члена из препуциального мешка или визуализацию вульвы. У самцов в возрасте от 60 дней и старше дифференциация становится возможной. В условиях неволи метод эффективен при условии предварительной выработки у животного толерантности к регулярным осмотрам: в Московском зоопарке пол детёнышей капибары был успешно определён в возрасте трёх месяцев именно посредством пальпации после курса тренингов. Ключевое требование — минимизация стресса, поскольку капибара остаётся диким животным с выраженной стресс-реакцией.
📌Ультразвуковое исследование
УЗИ признано наиболее доступным, быстрым, универсальным, точным и безопасным методом визуализации репродуктивных органов у животных. У самцов визуализируются семенники, расположенные подкожно в паховой области, а также придатки и добавочные половые железы (семенные пузырьки и предстательная железа). У самок идентифицируются матка, яичники и цервикальный канал. Применение допплеровского режима позволяет дифференцировать сосудистые структуры: у самцов — лозовидное сплетение и тестикулярную вену, у самок — васкуляризацию между медуллярным и кортикальным слоями яичника.
📌Рентгенография
На обзорных рентгенограммах у самцов капибары визуализируется бакулюм (os penis) — кость полового члена, длина которой составляет 3–4 см. Однако при стандартных укладках бакулюм может быть нечётко дифференцирован, что требует прицельного исследования области гениталий. Дополнительным рентгенологическим признаком у самцов старше одного года служат минерализованные образования в области половых органов (мочевые соли, визуализируемые как контрастные включения). Следует учитывать, что минерализация секрета в анальных мешках также варьирует и, вероятно, зависит от ранга животного, что может создавать дополнительные артефакты и затруднять интерпретацию снимков. У животных младше 12 месяцев указанные признаки, как правило, отсутствуют, что ограничивает диагностическую ценность метода у молодняка.
📌Визуальная идентификация у половозрелых особей
У взрослых самцов возможно визуальное выявление семенников без пальпации, однако это удаётся относительно редко ввиду их подкожного расположения и малых размеров. По некоторым данным, для капибары зарегистрирован один из самых низких гонадосоматических индексов среди грызунов, что объясняет низкую эффективность чисто визуальной диагностики. Половой диморфизм у капибар в целом проявляется только у взрослых животных и преимущественно по наличию моррильо, а не по размеру тела. Однако, как отмечено выше, выраженная железа может встречаться и у самок, что требует осторожности при визуальной оценке.
📌Молекулярно-генетические методы
Наиболее точным и наименее инвазивным методом, особенно для молодых особей, является ДНК-диагностика. Анализ проводится методом ПЦР с использованием маркеров амелогенина и консервативного региона SRY-HMG гена, локализованного в X- и Y-хромосомах. В качестве биоматериала используются кровь, волосяные фолликулы или тканевые образцы. Данный подход позволяет определить пол животного с первых дней жизни без стрессовой иммобилизации. НО в РФ он затрудняется из-за малого объема материала и выборки животных, соответственно отсутствует диагностика в лабораториях.
📎 Независимо от выбранного метода, обязательным условием является минимизация стрессовой нагрузки на животное, что требует предварительной адаптации к регулярным осмотрам. | 574 |
| 4 | +3 Методы определения пола
📌Пальпация с выведением наружных половых органов
Данный метод предполагает аккуратное мануальное выведение полового члена из препуциального мешка или визуализацию вульвы. У самцов в возрасте от 60 дней и старше дифференциация становится возможной. В условиях неволи метод эффективен при условии предварительной выработки у животного толерантности к регулярным осмотрам: в Московском зоопарке пол детёнышей капибары был успешно определён в возрасте трёх месяцев именно посредством пальпации после курса тренингов. Ключевое требование — минимизация стресса, поскольку капибара остаётся диким животным с выраженной стресс-реакцией.
📌Ультразвуковое исследование
УЗИ признано наиболее доступным, быстрым, универсальным, точным и безопасным методом визуализации репродуктивных органов у животных. У самцов визуализируются семенники, расположенные подкожно в паховой области, а также придатки и добавочные половые железы (семенные пузырьки и предстательная железа). У самок идентифицируются матка, яичники и цервикальный канал. Применение допплеровского режима позволяет дифференцировать сосудистые структуры: у самцов — лозовидное сплетение и тестикулярную вену, у самок — васкуляризацию между медуллярным и кортикальным слоями яичника.
📌Рентгенография
На обзорных рентгенограммах у самцов капибары визуализируется бакулюм (os penis) — кость полового члена, длина которой составляет 3–4 см. Однако при стандартных укладках бакулюм может быть нечётко дифференцирован, что требует прицельного исследования области гениталий. Дополнительным рентгенологическим признаком у самцов старше одного года служат минерализованные образования в области половых органов (мочевые соли, визуализируемые как контрастные включения). Следует учитывать, что минерализация секрета в анальных мешках также варьирует и, вероятно, зависит от ранга животного, что может создавать дополнительные артефакты и затруднять интерпретацию снимков. У животных младше 12 месяцев указанные признаки, как правило, отсутствуют, что ограничивает диагностическую ценность метода у молодняка.
📌Визуальная идентификация у половозрелых особей
У взрослых самцов возможно визуальное выявление семенников без пальпации, однако это удаётся относительно редко ввиду их подкожного расположения и малых размеров. По некоторым данным, для капибары зарегистрирован один из самых низких гонадосоматических индексов среди грызунов, что объясняет низкую эффективность чисто визуальной диагностики. Половой диморфизм у капибар в целом проявляется только у взрослых животных и преимущественно по наличию моррильо, а не по размеру тела. Однако, как отмечено выше, выраженная железа может встречаться и у самок, что требует осторожности при визуальной оценке.
📌Молекулярно-генетические методы
Наиболее точным и наименее инвазивным методом, особенно для молодых особей, является ДНК-диагностика. Анализ проводится методом ПЦР с использованием маркеров амелогенина и консервативного региона SRY-HMG гена, локализованного в X- и Y-хромосомах. В качестве биоматериала используются кровь, волосяные фолликулы или тканевые образцы. Данный подход позволяет определить пол животного с первых дней жизни без стрессовой иммобилизации. НО в РФ он затрудняется из-за малого объема материала и выборки животных, соответственно отсутствует диагностика в лабораториях.
📎 Независимо от выбранного метода, обязательным условием является минимизация стрессовой нагрузки на животное, что требует предварительной адаптации к регулярным осмотрам. | 1 |
| 5 |  +2Определение пола у капибар (Hydrochoerus hydrochaeris): методы и практические аспекты
Капибара — крупнейший современный грызун, обитающий в Южной Америке. Несмотря на то что определение пола у этого вида возможно с рождения, ранняя диагностика сопряжена с рядом объективных трудностей. У детёнышей наружные половые органы крайне малы, а у взрослых особей выраженный половой диморфизм практически отсутствует — это создаёт серьёзные сложности для визуальной идентификации. Настоящая публикация систематизирует существующие методики с акцентом на их применение в ветеринарной практике и зоологическом менеджменте.
Морфофизиологические предпосылки
⏺️Наружные половые органы самцов и самок капибары внешне чрезвычайно схожи: половой член самца в неэрегированном состоянии расположен интраабдоминально и скрыт в крупной врождённой инвагинации. Гениталии обоих полов маскируются анальными мешками, что делает дифференциацию по внешним признакам практически невозможной без целенаправленного осмотра.
⏺️У капибар имеется надноздревая (носовая) железа — моррильо, которая присутствует у обоих полов, однако степень её выраженности обычно显著 выше у самцов. ⏺️У самцов железа крупная, приподнятая, лишена волосяного покрова и секретирует обильный липкий белый секрет, участвующий в социальной сигнализации и маркировке территории. Размер и активность железы коррелируют с концентрацией тестостерона: у доминантных самцов она наиболее развита, тогда как у низкоранговых особей меньше и покрыта шерстью.
⏺️У самок моррильо, как правило, рудиментарна или слабо выражена, однако описаны редкие случаи значительной железы у самок, в том числе у лактирующих особей (например, наблюдения в зоопарках Азии). Таким образом, наличие выраженного моррильо не может служить абсолютным критерием пола и требует подтверждения другими методами. Дополнительным признаком у самок служит наличие шести пар вентральных молочных желез. | 452 |
| 6 | У взрослых самцов возможно визуальное выявление семенников без пальпации, однако это удаётся относительно редко ввиду их подкожного расположения и малых размеров. По некоторым данным, для капибары зарегистрирован один из самых низких гонадосоматических индексов среди грызунов, что объясняет низкую эффективность чисто визуальной диагностики. Половой диморфизм у капибар в целом проявляется только у взрослых животных и преимущественно по наличию моррильо, а не по размеру тела. Однако, как отмечено выше, выраженная железа может встречаться и у самок, что требует осторожности при визуальной оценке.
5.Молекулярно-генетические методы
Наиболее точным и наименее инвазивным методом, особенно для молодых особей, является ДНК-диагностика. Анализ проводится методом ПЦР с использованием маркеров амелогенина и консервативного региона SRY-HMG гена, локализованного в X- и Y-хромосомах. В качестве биоматериала используются кровь, волосяные фолликулы или тканевые образцы. Данный подход позволяет определить пол животного с первых дней жизни без стрессовой иммобилизации, НО в России он затруднен.
Выбор метода определения пола у капибар определяется возрастом животного, условиями содержания и доступностью диагностического оборудования. У новорождённых и молодых особей предпочтительны молекулярно-генетические методы или УЗИ; у взрослых животных надёжным ориентиром служит моррильо, однако следует помнить, что выраженная железа изредка встречается и у самок, а минерализация секрета в анальных мешках варьирует и может зависеть от ранга. Пальпация и рентгенография применяются как дополнительные инструменты. Независимо от выбранного метода, обязательным условием является минимизация стрессовой нагрузки на животное, что требует предварительной адаптации к регулярным осмотрам. | 1 |
| 7 | Определение пола у капибар (Hydrochoerus hydrochaeris): методы и практические аспекты
Капибара — крупнейший современный грызун, обитающий в Южной Америке. Несмотря на то что определение пола у этого вида возможно с рождения, ранняя диагностика сопряжена с рядом объективных трудностей. У детёнышей наружные половые органы крайне малы, а у взрослых особей выраженный половой диморфизм практически отсутствует — это создаёт серьёзные сложности для визуальной идентификации. Настоящая публикация систематизирует существующие методики с акцентом на их применение в ветеринарной практике и зоологическом менеджменте.
Морфофизиологические предпосылки
•Наружные половые органы самцов и самок капибары внешне чрезвычайно схожи: половой член самца в неэрегированном состоянии расположен интраабдоминально и скрыт в крупной врождённой инвагинации. •Гениталии обоих полов маскируются анальными мешками, что делает дифференциацию по внешним признакам практически невозможной без целенаправленного осмотра.
•У капибар имеется надноздревая (носовая) железа — моррильо, которая присутствует у обоих полов, однако степень её выраженности обычно выше у самцов. У самцов железа крупная, приподнятая, лишена волосяного покрова и секретирует обильный липкий белый секрет, участвующий в социальной сигнализации и маркировке территории. Размер и активность железы коррелируют с концентрацией тестостерона: у доминантных самцов она наиболее развита, тогда как у низкоранговых особей меньше и покрыта шерстью.
• У самок моррильо, как правило, рудиментарна или слабо выражена, однако описаны редкие случаи значительной железы у самок, в том числе у лактирующих особей (например, наблюдения в зоопарках Азии). Таким образом, наличие выраженного моррильо не может служить абсолютным критерием пола и требует подтверждения другими методами. Дополнительным признаком у самок служит наличие шести пар вентральных молочных желез.
Методы определения пола
1. Пальпация с выведением наружных половых органов
Данный метод предполагает аккуратное мануальное выведение полового члена из препуциального мешка или визуализацию вульвы. У самцов в возрасте от 60 дней и старше дифференциация становится возможной. В условиях неволи метод эффективен при условии предварительной выработки у животного толерантности к регулярным осмотрам. Ключевое требование — минимизация стресса, поскольку капибара остаётся диким животным с выраженной стресс-реакцией. Здесь не исключено и ветеринарное медикаментозное сопровождение.
2. Ультразвуковое исследование
УЗИ признано наиболее доступным, быстрым, универсальным, точным и безопасным методом визуализации репродуктивных органов у животных.
• У самцов визуализируются семенники, расположенные подкожно в паховой области, а также придатки и добавочные половые железы (семенные пузырьки и предстательная железа).
• У самок идентифицируются матка, яичники и цервикальный канал.
• Применение допплеровского режима позволяет дифференцировать сосудистые структуры: у самцов — лозовидное сплетение и тестикулярную вену, у самок — васкуляризацию между медуллярным и кортикальным слоями яичника.
3. Рентгенография
На обзорных рентгенограммах у самцов капибары визуализируется бакулюм (os penis) — кость полового члена, длина которой составляет 3–4 см. Однако при стандартных укладках бакулюм может быть нечётко дифференцирован, что требует прицельного исследования области гениталий. Дополнительным рентгенологическим признаком у самцов старше одного года служат минерализованные образования в области половых органов (мочевые соли, визуализируемые как контрастные включения). Следует учитывать, что минерализация секрета в анальных мешках также варьирует и, вероятно, зависит от ранга животного, что может создавать дополнительные артефакты и затруднять интерпретацию снимков. У животных младше 12 месяцев указанные признаки, как правило, отсутствуют, что ограничивает диагностическую ценность метода у молодняка.
4. Визуальная идентификация у половозрелых особей | 1 |
| 8 |  +5🔥🦎 Бесплатный вебинар по ящерицам!
Этот вебинар позволит вам:
- ознакомиться с анатомией ящериц
- понять физиологию этих животных
- узнать о принципах содержания ящериц в неволе
- познакомиться с лектором предстоящего большого курса по рептилиям - Сергеем Куторовым
✅ Лектор: Куторов Сергей Александрович
✅ Когда: 2 октября в 19:00 по Мск
✅ Цена: БЕСПЛАТНО
Ссылка на регистрацию: https://pruffme.com/landing/u1354857/tmp1790070717 | 426 |
| 9 |  Мастер класс ищем моделей для УЗИ - рептилии 🐍🦎🐢
От нас бесплатно узи целома с устным заключением ❤️
Адрес проведения: Образовательный Центр по адресу: г. Москва, 1-й Павелецкий проезд, д. 1 (станция метро «Павелецкая»).
Для записи: @lawazza | 505 |
| 10 | Ищем моделей на очный мастер класс по узи экзотам, который пройдет 5 октября (ориентировочное время 15-16 ч).
Нам нужны морские свинки 🐹 и кролики 🐇 по 3-5 штук. На одно животное поставим только 1 ученика, займёт минут 15, будем забривать шерсть на брюшке.
требуются 1-2 крыса с ОГМ для УЗИ головы 🐀
От нас бесплатное узи брюшной полости с устным заключением.
Адрес проведения: Образовательный Центр по адресу: г. Москва, 1-й Павелецкий проезд, д. 1 (станция метро «Павелецкая»).
Писать мне в ЛС [id6188179|@lawazza] | 63 |
| 11 |  +9✨ Два дня — на одном дыхании ✨
Вчера был по-настоящему крутой день в комьюнити моих дорогих коллег. Мы снова встретились — тепло, радостно, как дети. Особенно волнительно было увидеть коллег из Питера, Казани, Костромы… возможно, и Коломны — но тут не точно 🤣
Делились опытом в работе с рептилиями, слушали доклады, смеялись, спорили, обсуждали и даже ругались — но, конечно, только по-доброму. ❤️
Спасибо всем коллегам, что мы смогли собраться в одном месте, в один день. Некоторых очень не хватало, но мы всех вспомнили добрым словом.
Мероприятие для нас провела образовательная площадка Panteric. Было весело, комфортно и вкусно! 🦎🍃
Рада была познакомиться с новыми людьми и наконец увидеть тех, кого знала только через экран телефона и клинические случаи. Теперь это уже не просто сообщения и кейсы — это настоящие люди, с которыми хочется и работать, и дружить.
Спасибо за эти два дня. До новых встреч! 💚 | 500 |
| 12 |  🌱Долгожданный анонс! Хирургия рептилий. Базовый курс. 2-й поток! 🌿
В мае мы провели мастер-класс с Филиппом Петровичем Эскиным и Алексеем Игоревичем Климовским, и это было невероятно! 🔥Мы получили шквал заявок, и, к сожалению, не все успели попасть в группу. Мы услышали ваши просьбы и открываем запись на новый поток!
Когда: 29–30 сентября
Где: ВЦ Akimov-vet
Сайт: akimov.vet
📚Что входит в курс:
🌿Теория + методическое пособие (останется у вас)
🌿Практика на кадаврическом материале (руки запомнят всё!)
🌿Сертификат по окончании
⚠️Важно: Участвуют только практикующие врачи и студенты ветвузов. Места ограничены!
💰Стоимость:
▫️35 000 руб. — онлайн-перевод
▫ 30 000 руб. — наличными
Как записаться?
✍️Записаться можно по телефону: 8 (926) 827-55-17 (Анна)
Ждем вас, будет насыщенно и полезно! 🦎💉 | 497 |
| 13 | Прийдете | 528 |
| 14 |  Интересно, а сколько людей из моих подписчиков будут сегодня/завтра на конференции Panteric | 518 |
| 15 |  +1Оценка болевой чувствительности перед разрезом
Тест на pinch (сдавление пальца конечности или хвоста или кожи при помощи гемостата) — базовый ноцицептивный стимул. На хирургической стадии анестезии у ящериц ответ на pinch должен отсутствовать. Если животное реагирует движением конечности, головы или языка — глубина недостаточна, необходимо либо увеличить концентрацию ингаляционного агента, либо ввести болюс анальгетика.
Важный нюанс: у рептилий реакция на болевой стимул может сохраняться вплоть до исчезновения язычного и пальпебрального рефлексов — это означает, что ориентироваться только на «отсутствие движения» нельзя. Если на pinch есть реакция, но язык не высовывается, это тревожный сигнал: животное близко к передозировке, но при этом всё ещё воспринимает боль. | 516 |
| 16 |  +7Анестезиологическое обеспечение приматов: профессиональный протокол и критически важные аспекты безопасности
Работа с приматами без анестезии — это не просто риск, а прямое нарушение принципов безопасности. Нечеловекообразные приматы (NHP) — стрессированные животные, которые при неправильной фиксации могут нанести серьезные травмы человеку и являются потенциальным источником зоонозных инфекций, включая бешенство, оспу, туберкулез. Химическая иммобилизация должна использоваться всегда, когда это возможно, для минимизации риска травм и зоонозов для персонала и животного.
Премедикация и превентивная анальгезия
🔸Габапентин: 20–50 мг/кг per os за 1–2 дня до процедуры. В ветеринарной литературе для приматов (Macaca spp.) указана доза 25 мг/кг p.o. каждые 8–12 часов.
🔸 Тразадон: 5–10 мг/кг per os каждые 12 часов за 1 день до манипуляции.
Индукция в наркоз
🔸Мелкие приматы (мармозеты, тамарины и др.): ингаляционный бокс с изофлураном 5 об.%, затем масочно 2–3 об.% для поддержания. Индукция изофлураном у мелких животных обычно быстрая и достигается при концентрации 2–4 об.%.
🔸Крупные приматы: дексмедетомидин (ДДМ) в/м 0,05 мг/кг + индукция газовым анестетиком. Доза 0,05 мг/кг подтверждена исследованиями на макаках в комбинации с кетамином.
Иммобилизация с применением стрелковых шприцов (УВЫШ-1)
Для дистанционной иммобилизации используется духовое устройство УВЫШ-1 (дальность 5–65 м, время начала действия 5–20 с). Возможные схемы:
🔸ДДМ в/м 0,05 мг/кг + золазепам 6 мг/кг в/м. Комбинация тилетамина и золазепама (Zoletil®) в дозе 3,6 мг/кг применяется для химической иммобилизации.
🔸ДДМ 20–30 мкг/кг + кетамин 4 мг/кг. Комбинация медетомидина (150 мкг/кг) с кетамином (4 мг/кг) показала наилучшие результаты у ревунов (Alouatta seniculus). Для кетамина максимальная рекомендованная доза для приматов составляет 40 мг/кг.
Интубация и поддержание анестезии
Интубация (или масочная вентиляция в зависимости от ситуации) обеспечивает проходимость дыхательных путей и стабильность анестезии.
Мониторинг — обязательно и строго
Базовый анестезиологический мониторинг включает измерение ЧСС, ЧДД и температуры тела. Оценка оксигенации и вентиляции проводится визуально, с помощью пульсоксиметрии и капнографии, а также анализа газов крови. Оценка слизистых. Й
🔸 Пульсоксиметр: датчик размещают на ушах или пальцах, предварительно смочив спиртом для улучшения контакта. Следует учитывать, что ушная раковина может быть ненадежным местом для пульсоксиметрии у некоторых видов.
🔸Контроль температуры — СТРОГО! У мелких приматов гипотермия во время анестезии может быть опасной для жизни, поэтому необходимо использовать дополнительные средства обогрева. Мониторинг температуры должен проводиться каждые 5 минут.
Каждый протокол должен быть индивидуализирован с учетом вида, веса, состояния здоровья и темперамента примата. Однако неизменным остается одно: работа без адекватной анестезии — это неприемлемый риск как для животного, так и для ветеринарного специалиста. Безопасность начинается с химической иммобилизации и заканчивается тщательным мониторингом на всех этапах. | 518 |
| 17 |  Дыхательная система птиц: ключевые особенности для анестезии и ИВЛ
🔸Дыхание — через ноздри или рот.
🔸При анестезии/ИВЛ интубация обязательна: используют трубку без манжеты либо манжету не раздувают. При необходимости возможна установка трубки непосредственно в воздушные мешки.
🔸Трахеальные кольца полные. Сиринкс — важная анатомическая зона.
🔸Воздухоносные бронхи образуют медиолатеральную, медиодорсальную, латеровентральную и латеродорсальную группы.
🔸У большинства птиц 9 воздушных мешков: парные шейные, ключичные (одиночный, иногда парный), парные черепно-грудные, хвостовые и брюшные.
🔸Диафрагмы нет. Вдох и выдох активные, за счет межреберных мышц. Изменение объема тела создает перепад давления, обеспечивающий движение воздуха через легкие и мешки. Цикл двухфазный — воздух проходит систему за два вдоха.
🔸Минутный объем дыхания ниже, чем у млекопитающих: 0,3–0,4 л/мин/кг, при нагрузке может возрастать в 5 раз.
Расчет: ЧДД × дыхательный объем (15–30 мл/кг).
🔸У водоплавающих птиц повышен риск аспирации. | 435 |
| 18 | Дыхательная система птиц: ключевые особенности для анестезии и ИВЛ
· Дыхание — через ноздри или рот.
· При анестезии/ИВЛ интубация обязательна: используют трубку без манжеты либо манжету не раздувают. При необходимости возможна установка трубки непосредственно в воздушные мешки.
· Трахеальные кольца полные. Сиринкс — важная анатомическая зона.
· Воздухоносные бронхи образуют медиолатеральную, медиодорсальную, латеровентральную и латеродорсальную группы.
· У большинства птиц 9 воздушных мешков: парные шейные, ключичные (одиночный, иногда парный), парные черепно-грудные, хвостовые и брюшные.
· Диафрагмы нет. Вдох и выдох активные, за счет межреберных мышц. Изменение объема тела создает перепад давления, обеспечивающий движение воздуха через легкие и мешки. Цикл двухфазный — воздух проходит систему за два вдоха.
· Минутный объем дыхания ниже, чем у млекопитающих: 0,3–0,4 л/мин/кг, при нагрузке может возрастать в 5 раз.
Расчет: ЧДД × дыхательный объем (15–30 мл/кг).
· У водоплавающих птиц повышен риск аспирации. | 1 |
| 19 |  +9Клинический случай: Успешная терапия гипогликемической комы у крольчонка с крайне низкой массой тела
Коллеги, хочу поделиться интересным и показательным клиническим случаем из нашей практики, который демонстрирует важность интенсивной терапии и командной работы.
🐰Анамнез:
Пациент (карликовый кролик, самка) поступил в возрасте 6 месяцев с критически низкой массой тела — 350 г. Состояние при поступлении: гипогликемическая кома. От животного отказались предыдущие владельцы ввиду тяжести состояния и бесперспективности, по их мнению, дальнейшего лечения.
Диагностика и лечение:
Совместно с коллегой Анастасией Владимировной было принято решение о начале агрессивной интенсивной терапии. Протокол включал:
🔸Коррекцию гипогликемии и водно-электролитных нарушений (инфузионная терапия).
🔸Круглосуточный мониторинг витальных функций.
🔸Нутритивную поддержку.
🔸Преднизолон 2мг/кг в/в
Результат:
Терапия продлилась 7 дней. На фоне лечения удалось добиться стабилизации состояния, восстановления стойкого аппетита, нормализации дефекации и двигательной активности.
С момента выписки прошло 2 месяца. Пациент переведен в новую семью под ответственное наблюдение. В рамках плановой профилактики репродуктивных патологий (в частности, аденокарциномы матки) на весну запланирована овариогистерэктомия.
Резюме:
Данный кейс — отличный пример того, что даже при крайне неблагоприятном прогнозе и критических показателях у мелких экзотических пациентов, грамотная интенсивная терапия и вера в успех могут привести к полному выздоровлению. Не стоит сдаваться даже в самых сложных ситуациях! | 696 |
| 20 |  +2УЗИ через пластрон 🐢
У молодых черепах роговые пластины пластрона ещё тонкие и податливые. Это открывает отличную возможность для транспластронального ультразвукового исследования целома — без наркоза, без инвазивных доступов и с минимальным стрессом для пациента.
Почему это работает?
У ювенильных особей кальцификация пластрона ещё не завершена, поэтому ультразвуковой луч свободно проникает через щитки пластрона. У взрослых черепах этот метод почти неинформативен — приходится использовать подмышечные, паховые ямки или доступ через шею.
Что можно оценить:
🔸Мочевой пузырь.
🔸Сердце: размер, сократимость, перикардиальный выпот.
🔸Печень: эхоструктура, размер, сосуды.
🔸Почки (расположены в тазу, но у мелких особей могут быть доступны).
🔸Кишечник: моторика, газ, инвагинации.
🔸Свободная жидкость, абсцессы, новообразования.
Технические нюансы:
▪️Датчик: линейный, высокая частота (7–15 МГц и выше) — для мелких пациентов это критично.
▪️Гель подогреть до комнатной температуры.
▪️Фиксация минимальная, исследование быстрое — чтобы не переохладить и не спровоцировать стресс.
▪️Интерпретация требует опыта: анатомия черепах отличается от млекопитающих.
Клиническая ценность:
▪️Диагностика асцита, гепатопатий, заболеваний почек.
▪️Дифференциальная диагностика объёмных образований.
▪️Мониторинг динамики при лечении.
Ограничения:
▫️Метод работает только у молодых черепах (пока пластрон тонкий).
▫️У взрослых особей требуется другой доступ.
▫️Нужен опытный оператор и правильное оборудование.
Если в вашей практике есть черепахи — попробуйте этот доступ. Это безопасно, информативно и часто даёт ответы, которые сложно получить другими методами. | 572 |
